Características del LUGOL P/GRAM
| Análisis | Especificación |
| Aspecto | Líquido color marrón oscuro |
| Título (Iodo) | 0,30-0,40% |
| pH a 20°C | 6,0-7,0 |
Peligrosidad SGA
- Consejos de Precaución: P270, P102
- No comer, beber ni fumar durante su utilización. Mantener fuera del alcance de los ninos.
MODO DE USO
Coloración de Gram (Modificación de Hücker) Biopack®
Reactivo de Diagnóstico de Uso in Vitro
Finalidades de uso del producto:
La tinción por el método de Gram es la mas apropiada para conseguir información de valor y debe hacerse en todos los casos en que esté indicada la tinción. Se emplea también como método habitual para el examen de cultivo a fin de determinar su pureza y con fines de identificación. La tinción de Gram debe usarse para teñir cualquier muestra remitida para el cultivo de bacterias u hongos. Los gérmenes se clasifican como Gram positivos o Gram negativos dependiendo de su capacidad para retener el colorante violeta cristal tras su exposición a una solución de acetona alcohol. La reactividad de los microorganismos depende de las características de la pared celular. Las bacterias se tiñen positivas o negativamente con excepción de Legionella y Mycabacteria que no se tiñen en en lo absoluto. Los hongos son invariablemente Gram positivos. La tinción de Gram ayuda a determinar la presencia o ausencia de infección y los posibles microorganismos productores de la misma en caso de que exista.
Además los datos que proporciona la tinción pueden emplearse para interpretar los resultados del cultivo. Los microorganismos anaeróbicos y gérmenes resistentes, o los que han sido expuestos a antibióticos pueden observarse mediante la tinción de Gram y sin embargo no crecen en los cultivos.
En los casos de una sospecha de tuberculosis son necesarios procesos especiales de cultivo y tinción. Dado que el Mycobacterium tuberculosis y otros organismos resistentes al ácido no se colorean con la tinción de Gram, es necesario emplear uno de los diversos procedimientos para organismos ácido resistentes. Las micobacterias se tiñen con el método de Ziehl Neelsen. El Mycobacterium tuberculosis ácido alcohol resistente, de extremos redondeados, que se tiñen de forma irregular. Su aspecto es a veces algo incursado, tiene una longitud de 1 a 4 micrones, y a un ancho de 0.3 a 0.6 micrones. Su ácido-resistencia demostrable por la técnica de tinción de Ziehl Neelsen, se debe ante todo a los componentes lipídicos de su pared celular.
Principio de acción o aplicación del producto:
El examen de las muestras recibidas en el laboratorio microbiológico comprende dos tipos de procedimiento generales: el examen directo de una extensión teñida o sin teñir, y el cultivo en los medios adecuados. Al remitirse muestras para exámenes bacteriológicos, unas preparaciones y tinciones bien realizadas ofrecen una orientación excelente acerca de los medios que inocular y que ulteriores exámenes deben hacerse, siendo este un paso importante para el médico en el tratamiento del paciente. Para los estudios bacteriológicos hay varios métodos de tinción siendo especialmente útiles el método de Gram con algunas de sus modificaciones y, en el caso de una sospecha clínica de infección por Mycobacteria, el método de Ziehl Neelsen. Los productos COLORANTES BACTERIOLÓGICOS DE BIOPACK ® (COLORACÍON DE GRAM [MODIFICACIÓN DE HUCKER] Y COLORACIÓN DE ZIEHL NEELSEN) son colorantes de utilidad en el laboratorio microbiológico clínico. Todas las tinciones usadas en el laboratorio de microbiología clínica pueden ser funcionalmente divididas en 4 categorías: tinción primaria, mordiente, decoloración y tinción secundaria, esta última también llamada coloración de contraste o contratinción. La tinción primaria es generalmente un colorante básico con carga positiva. Los colorantes primarios comunes incluyen carbol fucsina, violeta cristal, azul de metileno y safranina. Estos colorantes primarios van a marca no solamente el microorganismo blanco, sino también muchos microorganismos no blancos y material de fondo. En el laboratorio las tinciones se usan de diferentes formas: para marcación directas de muestras, para que el objeto microscopio sea mas claramente visible que el no teñido, y para aumentar la utilidad del microcopio óptico, como constituyente de medio de cultivo donde se usan como indicadores del cambio de pH o por su acción bacteriostática, como indicadores de oxidación reducción para demostrar la presencia o ausencia de condiciones anaerobias. Los colorantes son compuestos orgánicos naturales o artificiales compuestos por tres componentes básicos: una anillo de benceno o aromático, un cromóforo, y grupos auxocrómicos. La mayoría de los colorantes biológicos son derivados del alquitrán y su estructura fundamental es el anillo de benceno. Los grupos atómicos específicos conocidos como cromóforos se asocian con el color. Estos radicales químicos absorben la luz de diferentescon el método longitudes de onda ya que actúan como primas químicos. El anillo de benceno con los radicales cromóforos se considera el cromógeno y es coloreado, pero en sí mismo no es un colorante ya que no puede unirse a los microorganismos o tejidos. Los grupos auxocrómicos proveen las propiedades de combinación del colorante formando uniones salinas electrostáticas con radicales ionizables sobre las proteínas, glicoproteínas y lipoproteínas de componentes de los tejidos o de las membranas de los gérmenes. Este proceso puede ocurrir directamente o a través de la acción quelante del mordiente.
Los colorantes son anfotéricos, es decir, pueden actuar como ácido o como base de acuerdo a si la mayor proporción del colorante es aniónica o catiónica.
Los colorantes básicos marcan estructuras que son ácidas, y los colorantes ácidos reaccionan con sustancias básicas. Un mordiente es un proceso químico o físico que fija el colorante primario al microorganismo blanco. Los mordientes comunes incluyen complejos iodados como se usa en la coloración de Gram, y calor o fenol usados en la marcación rápida ácida.
Un decolorante es una sustancia química que extrae la tinta no unida del microorganismo blanco. Luego del paso de la decoloración, los microorganismos blanco son el color de la tinción primaria, y los organismos no blancos y el fondo deben estar desprovistos de color. Los decolorantes comunes incluyen acetona o alcohol para la coloración de Gram, y una mezcla de ácido y alcohol para la marcación ácida rápida. La mayoría de los sistemas de tinción biológica emplean una marcación secundaria o contramarcación para proveer color a los microorganismos no blanco. En general, la contramarcación se haya dentro de una parte diferente del espectro visible de marcación primaria. Algunas contramarcaciones son aditivas a las marcaciones primarias. Por ejemplo, la contramarcación roja de la tinción Gram es aditiva a la marcación primaria azul para producir un microorganismo blanco de color púrpura. En otros casos la contramarcación no marca en absoluto al microorganismo blanco. Por ejemplo, la contramarcación azul de la marcación ácida rápida no penetra en el microbio blanco (Mycobacteria) para afectar su color rojo. Por lo tanto, el objetivo es rojo y el fondo es azul.
Componentes provistos con el producto:
Lugol 100 ml, Decolorante 100 ml, Safranina 100 ml, Violeta Cristal 100 ml.
Condiciones adecuadas de almacenamiento:
Almacenar a temperatura ambiente entre 15°C y 30°C. Proteger de la luz.
Conservar bajo llave en lugar fresco y bien aireado lejos del alcance do los niños. Mantener el recipiente bien cerrado y alejado de fuentes de ignición.
Precauciones, cuidados especiales y riesgos:
Tóxicos si se inhala o ingiere. Inflamable. Evitar contacto con la piel. Si ocurriera la inhalación, ingesta o contacto con la piel en forma accidental, consultar al médico. No fumar durante su uso. Solamente para uso diagnóstico in vitro.
Orientaciones sobre los cuidados con la muestra biológica:
Muestra de sangre. Es importante que la muestra de sangre sea recogida en forma aséptica, limpiando la piel con alcohol al 80-95% y luego aplicando una solución de ioduro al 2% en forma concéntrica en el sitio de venopuntura. Como la antisepsia nunca se da en forma instantánea, el desinfectante debe permanecer en contacto con la piel por lo menos durante 1 minuto. Se sugiere extraer 20 ml de sangre en adultos y 1 a 5 ml en niños. En condiciones óptimas, la sangre debe ser inoculada directamente en el medio de cultivo al lado del paciente mediante una jeringa o aguja. Cuando esto no fuera posible, la sangre debe ser transportada al laboratorio en tubo estéril conteniendo polianetolsulfonato sódico (SPS) y luego inoculada en el medio de cultivo.
Catéteres intravasculares Los catéteres intravasculares son una fuente importante de bacteriemia y funguemia. Por lo tanto, la identificación microbiana de catéteres es importante para establecer la relación con infección con gérmenes Gram positivos y Gram negativos. Se debe remitir al laboratorio 5 cm de la porción distal del catéter. La muestra debe ser transportada al laboratorio en forma inmediata para prevenir la desecación.
Heridas, tejidos, abscesos, muestra de drenaje. El análisis microbiológico de estas muestras muchas veces es la única información acerca de la etiología de un proceso infeccioso. Toda vez que se pueda es preferible tomar muestra del tejido o del líquido de la lesión a realizar hisopados. Cuando sólo puedan obtenerse muestras de hisopados. Éstos deben abarcar todas las superficies sospechosas.
Orina. Como la orina es un excelente medio de crecimiento para los microorganismos, las muestras de orina deben ser cultivadas dentro de la hora de recolección de la muestra a menos que sean refrigeradas. En paciente de sexo femenino y en hombres con incontinencia es preferible utilizar el chorro medio de orina como muestra. Ante la sospecha de infección por gérmenes anaeróbicos es preferible utilizar la punción suprapúbica ya que la uretra es colonizada normalmente por gérmenes anaeróbicos que podrían interferir con el resultado.
El laboratorio que recibe la muestra debe anotar al momento de recepción para identificar el tiempo de tránsito de la muestra. Las muestras que han estado demasiado tiempo en tránsito pueden no ser útiles para el análisis microbiológico. Las muestras deben ser transportadas en recipientes adecuados. El personal que toma o transporta la muestra debe estar informado acerca del riesgo que contraer una enfermedad infecciosa que es inherente a esta actividad.
Técnica de Uso:
1- Preparar el extendido de la manera usual, fijándolo mediante calor.
2- Cubrir el extendido con violeta cristal por 1 (un) minuto aproximadamente.
3- Lavar con agua corriente.
4- Cubrir el extendido con lugol durante 1 (un) minuto aproximadamente.
5- Lavar con agua corriente.
6- Decolorar por arrastre durante no mas de 5 (cinco) segundos.
7- Lavar completamente con agua corriente para detener la acción del decolorante.
8- Contrastar con safranina durante 1(un) minuto aproximadamente.
9- Lavar con agua corriente y dejar escurrir el porta en posición vertical.
10- Secar y examinar usando aceite de inmersión Biopack®
Limitaciones del proceso de medición:
La técnica de Gram es un primer paso orientativo para identificación de bacterias y hongos en líquidos biológicos. Le permite al laboratorista tener una primera aproximación al germen causal de una infección lo cual, a su vez, permite al médico iniciar el tratamiento con prontitud a la espera de otros resultados de laboratorio. Luego de la realización de la prueba de Gram, el cultivo de la muestra proveerá información adicional para la identificación del germen y el antibiograma informará la sensibilidad antibiótica del mismo.
Solamente para uso profesional:
La aplicación de este tipo de reactivos debe ser realizada por personal especializado.
El usuario deberá cumplir las directivas locales sobre seguridad en el trabajo y aseguramiento de la calidad.
Protección contra infecciones:
El usuario debe considerar el uso de equipamiento de protección personal eficaz contra infecciones de acuerdo con las directivas de trabajo en laboratorio.
